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    如何能把ELISA實驗做好?操作過程中的注意事項??!

    2020-06-30 瀏覽次數:1827

    1. 試劑盒使用前室溫平衡20-30分鐘

    溫度是ELISA結合反應的重要影響因素,為使所有樣本在一致的溫度下反應,實驗前務必將所有的試劑平衡至室溫,包括檢測樣本,避免因溫度的動力學反應差異而導致ELISA檢測結果的不準確。若無該過程,可能導致一些弱陽性樣本出現假陰性。

     

    2. 規范加樣:不規范的移液操作可能帶來0.1%到5%的移液誤差,甚至更高!

    a. 移液器定期校準:選擇密封性好質量可靠的吸頭,吸量不準確,直接影響檢測結果;

    b. 加樣前,溶液充分混勻,垂直懸空加入液體,避免加在孔壁上,不可產生氣泡;

    c. 加樣時避免液體濺出,如有樣本濺出,應用吸水紙輕輕拭干,并做相應記錄;

    d. 如果加樣槍漏氣以至于加樣的量不夠,不能用槍吸出再加,做相應記錄實驗;

    e. 每次加樣順序一致,尤其底物、終止液順序一致,保證每個孔顯色時間相同。


    3. 標準品的溶解與稀釋,嚴格按說明書要求進行。

    a. 粉末標準品短暫離心,讓因運輸沾到管蓋、管壁的標準品沉到管底。

    b. 根據瓶標簽加入一定體積的蒸餾水(或說明書溶液),加水后輕柔渦旋震蕩,室溫靜置溶解10-30分鐘,讓粉末*溶解。

    注意:加水(或說明書溶液)后暫不用移液槍吹吸,避免蛋白未溶解,槍頭帶出部分蛋白,待*溶解后可吹吸或渦旋振蕩混勻。

     

    4. 標準品和樣本做復孔

    復孔的目的在于:可以計算檢測結果平均值,使實驗結果更準確;通過復孔結果對比,評估試劑盒的精密度及實驗中是否存在誤操作;


    5. 震蕩操作

    a. 孵育過程震蕩,可以加快、加強抗原抗體之間的相互碰撞接觸,使得反應更加*,OD值通常比未震蕩孵育的結果要高;

    b. 洗滌過程中震蕩,可以使洗板更干凈,很大程度上降低背景值,同時提高試劑盒檢測的靈敏度。


    6. 洗滌操作

    a. 手工洗板,拍板時要垂直,避免交叉污染,用力不能過猛,防止抗原抗體復合物脫離;

    b. 機器洗板應經常檢查沖洗頭是否暢通,若被雜物堵塞可用注射器針頭挑出。

    c. 扣干后的酶標板應立即加液,不能干板太久。

     

    7. 顯色判斷

    說明書中提供的顯色時間僅為經驗,具體時間需隨時注意觀察。通常濃度的標準品顏色不再變深,S1、S2、S3有明顯梯度,S5有淡藍色,或者標準品S1孔在630 nm的OD值在0.5-0.7、S5孔的OD值達到0.05-0.08,可以終止反應。

     

    8. 檢測

    a. 酶標儀使用前務必預熱10-15分鐘,使結果更穩定;

    b. 采用雙波長測定吸光值,排除單波長檢測時的測定干擾(樣本的干擾、干擾色等)。一般采用大波長為參考波長,在參考波長630 nm(570 nm)下,檢測物的吸光值小,檢測波長450 nm和參考波長630 nm(570 nm)的吸光值之差可以消除非特異性吸收,雙波長測定,可以大限度的消除指紋、雜質及不透光的物質對酶標儀讀數帶來的誤差,以保證實驗數據的準確度。

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